1.4. 核酸洗脱
　　　　1.4.1 将核酸吸附柱装入一无核酸酶1.5ml离心管，小心在吸附膜中央加入50μl预热洗脱液，室温静置4分钟。
　　　　1.4.2 10000 rpm离心2分钟，离心管中液体即待测样本RNA。
　　　　2. PCR扩增：
　　　　2.1 实验设计：
　　　　2.1.1待检样本检测：每份样本分别使用2种反应液（H7和N9反应液）进行检测，综合2种反应液的检测结果对样本进行判定。
　　　　2.1.2对照品检测：每次试验都应设置阴性对照和阳性对照。
　　　　2.2反应体系的配制：
　　　　2.2.1准备工作：将2种反应液（H7和N9反应液）融化后振荡混匀，离心6000rpm 10秒。
　　　　2.2.2 2种反应体系（H7和N9）的配制：取2个1.5ml 无核酸酶离心管，计算待测样本数量(n)，分别取20μl×（n+2）反应液（H7和N9）、0.5μl×（n+2）DNA聚合酶和0.5μl×（n+2）逆转录酶充分混匀，离心6000rpm 10秒。
　　　　n + 2 = n份样本+1份阳性对照+1份阴性对照；
　　　　2.3反应体系分管：
　　　　每份待测样本设置2个PCR扩增管（H7和N9），分别将每种反应体系按20μl/管分装至对应的PCR扩增管中。
　　　　2.4加样：
　　　　每份待测样本RNA、阳性对照、阴性对照以5μl/管分别加入2个PCR扩增管中。
　　　　2.5扩增检测：
　　　　将加样后的PCR扩增管分别转移到全自动荧光定量PCR检测仪上进行扩增检测，不同仪器的设置如下：
　　　　2.5.1全自动荧光定量PCR检测仪（RG3000、ABI Prism 7500、ABI Prism 7000型）扩增程序：
　　　　对于ABI Prism 7500、ABI Prism 7000型全自动荧光定量PCR检测仪，荧光信号设置为：Reporter Dye1：FAM、JOE/VIC，Quencher Dye1：NONE，Passive Reference：NONE。其他型号仪器可设置为FAM和HEX通道。荧光PCR扩增程序的设置见表1。反应总体积为25μl。
表1.荧光PCR扩增程序
　　步骤 　反应温度 　　时间 是否采集光 循环数
　　逆转录及变性 　50℃ 　30分钟 　　否 　　1
　95℃ 　3分钟 　　否
　　预扩增 　95℃ 　15秒 　　否 　　5
　50℃ 　30秒 　　否
　72℃ 　1分钟 　　否
　扩增及荧光收集 　95℃ 　10秒 　　否 　　40
　55℃ 　40秒 　　是
　　　　2.5.2 全自动荧光定量PCR仪（Roche LightCycler系列）扩增程序：
　　　　选择FAM、HEX通道收集荧光。荧光PCR扩增程序见表2。
表2.荧光PCR扩增程序
　　步骤 反应温度 　　时间 是否采集荧光 循环数
逆转录及变性 50℃ 　　30分钟 　　否 　　1
93℃ 　　3分钟 　　否
　　预扩增 93℃ 　　15秒 　　否 　　5
50℃ 　　30秒 　　否
72℃ 　　1分钟 　　否
扩增及荧光收集 93℃ 　　10秒 　　否 　　40
55℃ 　　40秒 　　是
　　
　　　　3. 结果分析：
　　　　3.1本品H7荧光探针的报告荧光为FAM，N9荧光探针的报告荧光为FAM，RNP荧光探针的报告荧光为HEX。所以应选择FAM通道和HEX通道分析试验结果。
　　　　3.2 基线（Baseline）范围根据仪器要求设定，目的为校正背景荧光干扰，终止循环（End）一般设置为最强样本出现扩增信号的前3-4个循环。
　　　　3.3 阈值线用于判断样本是否扩增，应调整使阈值线高于荧光背景和阴性对照的荧光信号，或点击分析（Analysis）自动获得。
　　　　4. 质量控制：
　　　　每次试验应设置阳性对照和阴性对照，且应符合以下要求，否则试验结果不成立。
　　　　4.1阴性对照无Ct值或Ct值为0。
　　　　4.2 阳性对照Ct值小于30.0。
　　　　【参考值（参考范围）】
　　　　Ct值≤37.0报告该反应阳性；
　　　　无Ct值或Ct值为0报告该反应阴性；
　　　　37.0＜Ct值＜40.0为灰区；
　　　　内标RNP有效的范围为：0＜Ct值＜33.0；
　　　　【检验结果的解释】
　　　　1. 在内标RNP结果成立的条件下各种判读模式如下：
反应液 模式1 模式2 模式3 模式4
H7 - - + +
N9 - + - +
RNP + + + +
结果判断 H7N9亚型禽流感病毒RNA阴性 H7N9亚型禽流感病毒RNA阴性 H7N9亚型禽流感病毒RNA阴性 H7N9亚型禽流感病毒RNA阳性

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